가금류 농장에서 흔한 빈대인 Cimex lectularius를 방제하기 위한 전신 수의학 약물

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Sep 25, 2023

가금류 농장에서 흔한 빈대인 Cimex lectularius를 방제하기 위한 전신 수의학 약물

기생충 및 벡터 15권, 기사 번호: 431(2022) 이 기사 인용 3829 액세스 2 인용 418 Altmetric Metrics 세부 정보 일반적인 빈대인 Cimex lectularius L.은 조혈성 빈대입니다.

기생충 및 벡터 15권, 기사 번호: 431(2022) 이 기사 인용

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측정항목 세부정보

일반적인 빈대인 Cimex lectularius L.은 1960년대까지 가금류 농장에서 흔한 해충이었던 조혈성 체외 기생충입니다. 디클로로디페닐트리클로로에탄(DDT)과 유기인산염은 대부분의 침입을 근절했지만, 인간 체외기생충으로서의 세계적 부활과 동시에 빈대 침입이 가금류 농장에서 다시 나타나고 있습니다. 빈대가 닭 건강에 미치는 영향은 정량화되지 않았지만, 자주 물고 피를 흘릴 경우 새에게 스트레스, 감염, 심지어 빈혈까지 유발할 것으로 예상됩니다. 빈대 통제 옵션은 가금류 환경의 민감한 특성, 빈대 통제 라벨이 붙은 제한된 제품, 광범위한 활성 성분에 대한 빈대 집단의 저항성으로 인해 제한됩니다. 수의학 약물은 일반적으로 동물의 내부 기생충과 외부 기생충을 통제하는 데 사용됩니다. 이 연구에서 우리는 전신 항기생충제로 숙주를 치료함으로써 빈대에 대한 두 가지 일반적인 수의학 약물의 효과를 평가했습니다.

우리는 막 공급 시스템을 사용하여 여러 빈대 균주에 대해 이버멕틴과 플루랄라너의 용량-반응 연구를 수행했습니다. 또한, 이들 약물의 다양한 용량을 닭에 투여하고 두 가지 전달 방법(국소 치료 및 섭취)을 사용하여 빈대 사망률에 대한 이버멕틴과 플루랄라너의 효능을 평가했습니다.

인공 먹이 시스템을 사용하여 이버멕틴과 플루랄라너는 모두 살충제에 민감한 빈대에서 높은 사망률을 초래했으며, 플루랄라너는 피레스로이드 및 피프로닐 저항성 빈대에 효과적인 것으로 밝혀졌습니다. 이버멕틴은 닭에게 국소 치료나 섭취로 효과가 없는 반면, 플루랄라너를 섭취한 닭을 먹은 빈대는 치료 후 최대 28일 동안 닭을 먹일 때 높은 사망률을 보였습니다.

이러한 발견은 전신 체외기생충 약물이 가금류 농장에서 빈대 침입을 통제하기 위해 실제적으로 사용될 수 있는 큰 잠재력을 가지고 있음을 시사합니다. 이러한 발견은 또한 빈대 방제를 위한 유력한 새로운 활성 성분으로서 플루랄라너(및 잠재적으로 다른 이속사졸린)의 효능을 입증합니다.

일반적인 빈대(Cimex lectularius L.)는 인간을 잡아먹는 절대 조혈성 체외 기생충입니다. 그러나 빈대는 새와 박쥐를 포함한 다른 동물을 기회적으로 기생시킵니다[1]. 가금류 농장에서 빈대 감염은 이미 1940년대 북미[2]와 유럽[3]에서 보고되었습니다. 미국에서는 1985년에 빈대가 가금류의 주요 해충으로 보고되었습니다[4].

빈대는 날개가 없고 야행성이며 분산 능력이 제한된 비밀스러운 곤충입니다. 따라서 가금류 시설에 빈대를 도입하는 것은 공급망이나 농장 근로자를 통해 인간이 중재할 가능성이 높습니다[4]. 가금류 건강에 대한 빈대가 미치는 영향은 충분히 연구되지 않았지만, 다른 혈액을 공급하는 외부 기생충과 마찬가지로 빈대 침입이 소양증, 깃털 쪼기, 불안, 빈혈, 2차 감염 및 가금류 건강의 전반적인 감소를 유발할 것이라고 예상하는 것이 합리적입니다. 및 생산 [5, 6].

빈대 침입은 1940년대 후반에 디클로로디페닐트리클로로에탄(DDT)과 유기인산염을 사용하여 가금류 산업에서 대부분 근절되었습니다[3]. 오늘날 피레스로이드는 일부 유기인산염, 스피노신 및 네오니코티노이드와 함께 가금류 산업에서 빈대 개체군을 통제하기 위해 사용되는 주요 살충제 종류입니다. 피레스로이드 저항성은 전 세계적으로 빈대 개체군에 널리 퍼져 있으며[7], 표적 부위 저항성(녹다운 저항성[kdr] 돌연변이)은 지난 10년 동안 빈대 개체군에서 극적으로 증가했습니다[8]. 따라서 저항성이 높은 빈대가 가금류 농장에 도입될 것으로 예상됩니다. 살충제의 제한된 가용성과 가장 일반적으로 사용되는 살충제에 대한 저항성은 가금류 농장에서 빈대 방제의 주요 제약인 것으로 보입니다. 무기 살충제의 일부 분진 제제도 이용 가능하지만 까다로운 가금류 환경에서 그 효능은 일관되지 않았습니다[9].

 97% up to day 14. There was higher variation and an overall decline in bed bug mortality 21 days (66.8 ± 22.9%, range: 0–100%) and 28 days (60.5 ± 19.6%, range: 0–100%) post fluralaner treatment. It should be noted that on day 21, we assayed only four of the six chickens due to technical constraints. Nevertheless, there were no significant differences in bed bug mortality across all time points post fluralaner gavage treatment (P > 0.05) (Fig. 5a). A graphical representation of the time-course of bed bug mortality before and after the chickens were fed fluralaner (days 0–28) and before and after bed bugs fully fed on chicken blood (days 0–7) is shown in Fig. 6a./p> 95% up to 21 days post treatment and there were no significant differences in mortality between days 2 and 21 (Tukey’s HSD, P > 0.05). By day 28, however, mean mortality significantly declined to 69.5 ± 8.1% (P < 0.05), and we observed higher variation among replicates (range: 38.5–92.9%) (Figs. 5b, 6b). It should again be noted that in this experiment, a second gavage treatment with 0.5 mg fluralaner/kg was administered on day 7; a graphical representation of the time-course of bed bug mortality before and after the chickens were fed fluralaner (days 0–28) and before and after bed bugs fully fed on chicken blood (days 0–7) is shown in Fig. 6b./p> 61.0 ng/ml, maintained for several days, would be desirable for the effective suppression and ultimately elimination of bed bugs in chicken facilities. However, multiple bioassays with bed bugs and pharmacokinetic studies in chickens suggest that ivermectin does not reach this target concentration in blood. For example, administration of ivermectin to laying hens by the ingestion route, at 0.2 mg/kg, resulted in ivermectin rapidly reaching a maximum concentration (Cmax) of only 10.2 ng/ml at 3.4 h post treatment, followed by a rapid decline, with an elimination half-life of only 0.23 days [25]. Similar results were reported following the administration of ivermectin to broiler chickens at 0.4 mg/kg in drinking water on two consecutive days, and again 14 days later; although ivermectin reached maximum plasma concentrations of 145.5–182.7 ng/ml within 30–60 min post treatment, it rapidly declined to undetectable levels by 12–24 h post treatment [33]. When ivermectin was injected intravenously at 0.2 mg/kg body mass, Cmax reached 316.0 ng/ml 6 h later, but it fell below the target concentration for bed bugs in < 1 day [25]. Finally, in a recent evaluation of the effects of ivermectin-treated backyard hens on Culex mosquitoes, chickens were fed ivermectin-supplemented feed for 72 consecutive days (200 mg ivermectin/kg feed and 0.151 kg feed/chicken daily) [34], representing a very high dose of 30.2 mg ivermectin per chicken per day. However, plasma concentrations in the treated chickens averaged only 33.1 (range: < 5–155.2) ng/ml, and they peaked early in the study (54.9 ng/ml on day 11) and declined to much lower concentrations over the 72-day-long study (20.6 ng/ml on day 70) [34]. Overall, these studies consistently show low bioavailability of ivermectin in chicken blood, likely due to rapid detoxification and clearance from the blood and possibly other traits, such as high metabolic rate [25]. Therefore, notwithstanding the sublethal effects of ivermectin on bed bugs (morbidity, including lower fecundity, difficulty feeding and incomplete molts) [35], we tentatively conclude that treatments with ivermectin might not be effective for the elimination of bed bugs from infested poultry farms./p> 492-fold) [41]. However, none of these bed bugs had the mutation in the Rdl gene associated with resistance to fipronil and dieldrin. Moreover, Gassel et al. [40] showed that fluralaner efficacy is unaffected by dieldrin and fipronil resistance in the cat flea, ticks and fruit fly, indicating a lack of cross-resistance due to fluralaner targeting a site on GABACl channels distinct from the site targeted by cyclodienes and fipronil. These findings suggest that cross-resistance to fipronil and dieldrin is not likely to interfere with the efficacy of fluralaner on bed bugs in poultry farms. Nevertheless, consideration of fluralaner for bed bug control should proceed with caution because bed bug populations may be experiencing selection with fluralaner and afoxalaner through ongoing exposure to Bravecto®- and NexGard®-medicated dogs and cats./p>